Кашина Наталия Артуровна – студентка Лечебного факультета Новосибирского государственного медицинского университета.
Чингис Анужин – студентка Лечебного факультета Новосибирского государственного медицинского университета.
Колпаков Аркадий Ростиславович – доктор медицинских наук, профессор кафедры Фармакологии, клинической фармакологии и доказательной медицины Новосибирского государственного медицинского университета.
Князев Роман Александрович – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник НИИ биохимии.
Аннотация: В широко применяемой в биологии и медицине модели изолированного по Лангердофу сердца крысы, в основном, в качестве субстрата окисления используется глюкоза, хотя в условиях целого организма около 70% энергии работающему сердцу дает окисление жирных кислот. Однако, из-за гидрофобности последних в данной модели в раствор Кребса-Хензеляйта приходится дополнительно вносить большие количества альбумина (2% к объему), что существенно затрудняет проведение исследований. В литературе имеются отдельные сообщения об использовании в экспериментах липидсодержащих препаратов для парентерального питания больных (Интарлипид). Данных о возможности применения липофундина мы не встречали.
Ключевые слова: Липофундин, раствор Кребса - Хензеляйта, Интралипид,изолированное по Лангердофу сердце крысы.
Перфузия изолированного по Лангердофу сердца крысы является одной из удобных и доступных методик для изучения биологических и физиологических свойств работы сердца, а также влияние различных лекарственных веществ и физических факторов ex vivo ( то есть в искусственной среде).[1]
Оскар Лангердоф, чьим именем названа данная модель, был врачом и физиологом. Проводя эксперименты, он перфузировал коронарные сосуды дефибрилированной кровью через аорту, то есть ретроградно. Таким образом кровь шла в обратном направлении, что было достаточно для длительной работы изолированного сердца [2]. Однако, данный метод давал только общее представление о работе сердца , потому что кровь циркулировала не так как в организме. Несмотря на недостатки метода, он все же используется и сегодня с некоторыми дополнениями .
Для проведения перфузии изолированного сердца необходимо учесть некоторые условия эксперимента, а также использование определенного вида животных, которые будут является донорами сердец. Наиболее подходящими являются крысы Вистар.
Важной частью эксперимента является сохранение жизнедеятельности изолированного сердца, не допустить нарушение ферментных систем и ишемии за счет использования буферных растворов, состав которых максимально приближен к плазме крови. Для перфузии изолированного сердца является стандартный раствор Кребса-Хензеляйта (состав в ммоль/л NaCl – 118,0; KCl – 4,7; CaCl2 – 2,5; KH2PO4 – 1,2; MgSО4 – 1,6; NaHCO3 – 25,0; Na-EDTA – 0,5; глюкоза– 11) [3]. Для достижения уровня pH 7,4, через раствор пропускают карбоген- смесь, состоящая из 95% кислорода и 5% углекислого газа.
Стоить отметить, что миокард получает энергию в виде АТФ, которые синтезируются в результате окисления энергетических субстратов в митохондриях. В качестве основных энергетических субстратов для сердца выступают жирные кислоты, которые в результате окисления синтезируется 2/3 АТФ от всего количества, а 1/3 -дают окисление глюкозы [4,5].
Использование модифицированного раствора Кребса-Хензеляйта, в состав которого входят жирные кислоты, крайне затруднительно, так как из-за их гидрофобности приходится дополнительно вносить большие количества альбумина, что затрудняет проведение исследования.
Возможность использования липидсодержащих препаратов для проведения перфузии изолированного сердца доказывают проведенные исследования с препаратом для парентерального питания интралипид [6]. В своем составе на 1000 мл 20% вещества содержит: ( соевых бобов масло 200 г- триглицериды длинной цепи).
Для нашего исследования был взят - липофундин 20%. В отличие от интралипида 20% , он обладает оптимальным сочетанием триглицеридов с длинной и средней цепью. Особенностью последних является то , что они быстрее гидролизуются и окисляются, образуя больше энергии , чем длинноцепочечные триглицериды. [7]
Целью нашего исследования было изучение влияния липофундина, применяемого в клинике для парентеральго питания, на работу изолированного по Лангердофу сердца крысы.
Эксперименты на лабораторных животных проводили в соответствии с «Правилами работ с использованием экспериментальных животных».
Самцам крысам линии «Вистар», вес 250±15 г., внутрибрюшинно вводили гепарин (500 ЕД на крысу), после чего были наркотизированы парами эфира. После декапитации и торакотомиии сердца быстро извлекали и соединяли с системой для перфузии по методу Лангердорфа. Для перфузии коронарных сосудов использовался модифицированный буфер Кребса- Хензеляйта, насыщенный газовой смесью (95% кислород и 5% углекислый газ), при температуре раствора 37,5 С под давлением 70 мм.рт.ст, а также при постоянном контроле pH (7,4) .
Главными показателями работы изолированных сердец , которые оценивались в нашем исследовании являются: частота сердечных сокращений , давление в левом желудочке и величину коронарного потока.
Для регистрации давления в левом желудочке через разрез , сделанный в левом предсердии за ушком, вводили латексный баллончик, соединенный с цифровым датчиком.
Объемная скорость коронарного кровотока определялась объемом оттекающей от сердца жидкости (мл/мин).
Показателем работоспособности миокарда было произведение давления на частоту сокращений (P=A*Ч) , а эффективность работы - ( Р/КП) отношение работоспособности к величине коронарного потока.
Сердца животных , которые первые 20 минут перфузировались раствором, содержащий 11 ммоль глюкозы, были контрольной группой. Далее начинали перфузию раствором с липофундином (1мл на 1 л раствора) .
Эксперимент длился 40 минут. Контрольными точками были 0 (контроль), 10, 20, 30,40 минут работы сердца с использованием липофундина. В каждом опыте (5) показатели, регистрируемые через 20 минут работы сердца после его подключениям к системе перфузии, служили контролем и принимались за 100%.
Таким образом: к 20 минуте перфузии липофундином частота сердечных сокращение снижалась на 20% по отношению к контролю и сохранялась на уровне 85-90% до конца эксперимента (рис. 1). Однако давление в левом желудочке, создаваемое работающим сердцем, возрастало в течение всего периода наблюдения и достигала к 40 минуте 210% от исходного (рис 1). То есть работоспособность изолированного сердца при перфузии липофундином возрастала на 80%(рис. 2). Величина коронарного потока увеличивалась лишь на 30%, что говорит о повышении эффективности работы сердца (рис. 3). Нарушений ритма сердечных сокращений ни в одном из опытов не наблюдалось.
Рисунок 1. Запись работы изолированного сердца крысы: А – контроль (с глюкозой). Время перфузии 20 мин. Б-Д – при добавлении липофундина (1 мл - 1 л). Время перфузии Б (10 мин), В (20 мин), Г (30 мин), Д (40 мин).
Рисунок 2. Работоспособность изолированного сердца при перфузии липофундином возрастала на 80%.
Рисунок 3. Эффективность работы сердца, на фоне увеличения коронарного потока на 30%, значительно повышается.
Проведенные исследования показали, что липофундин может быть использован в экспериментах на изолированном по Лангердофу работающем сердце крысы как источник субстратов окисления для оценки влияния ксенобиотиков на метаболизм и работоспособность миокарда.
Список литературы